问题
OCL
28, 2021
油脂和油脂领域的绿色和白色生物技术——以及蛋白质作物/生物技术领域的绿色和白色生物技术
物品编号 37
数量的页面(年代) 8.
迪伊 https://doi.org/10.1051/ocl/2021025
亚搏娱乐 2021年7月08

©N.U.F.Niangoranet al。,由EDP Sciences出版,2021年

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集锦

  • S的能源效率pirulina platensis生物量和色素生成(类胡萝卜素、叶绿素和藻蓝蛋白)与光照(包括光照强度和光周期)密切相关。

  • 随着细胞浓度的增加,调节光照水平,在保持生物量和色素的高产量的同时,实现了节能。

1导言

微藻是生物质能生产的潜在来源。微藻在食品和饲料、化妆品和制药工业等领域有着广泛的应用。此外,微藻被认为是一种很有前景的生物燃料来源(贝克尔,2007;卡瓦略et al。,2011年;Blankenet al。,2013年).在有价值的微藻中,我们可以提一下螺旋藻. 的确螺旋藻可含有60 - 70%的干重蛋白质。它富含维生素,特别是维生素B12、维生素原A和矿物质,特别是铁(Bezerraet al。,2011年).合并螺旋藻将生物质转化为食物有助于提高其营养价值(科鲁,2012年)它是叶绿素a(Chl-a)、类胡萝卜素和藻胆蛋白(尤其是藻蓝蛋白(Phy))等有价值色素的重要来源(Boussiba和Richmond,1980年)藻蓝蛋白是一种非常重要的色素,因为它可用于许多应用。在食品工业中,它是一种天然的蓝色食用色素。在生物技术领域,它是一种荧光标记物。它具有神经保护、抗炎和抗氧化特性(Bhat和Madyastha, 2000年;罗伊et al。, 2003年).至于叶绿素,除了对健康有益外(抗氧化、抗炎、抗突变和抗菌特性)(加拉索et al。, 2019年),它也可用作着色剂。在叶绿素产生的来源(植物、微藻等)中,螺旋藻是叶绿素含量最高的地区之一(科鲁,2012年).最后,螺旋藻还含有类胡萝卜素(以其抗氧化作用而闻名),含有大量的β-胡萝卜素(类胡萝卜素色素组中67%至79%)。以维生素原A或β-胡萝卜素的形式摄入类胡萝卜素可改善免疫系统,降低患慢性退行性疾病、心血管疾病和某些类型癌症的风险(罗德里格斯·康塞普西翁et al。,2018年).

微藻可以通过不同的营养源培养来生长:自养、异养、混合自养和光自养(乔纳卡和诺沃利塔,2004年).微藻的光自养或混合养生长需要CO2.和光线实现光合作用。可以通过自然照明(SUN)或人造照明(灯)提供光能。在受控的生长环境中,例如室内生物反应器,人造光的使用是强制性的。人造照明通常能够控制光强度和照明时间的可能性。尽管人造照明可以提高生产率,但它也会产生额外的成本。因此,在光合作用,能量效率和光谱组合物方面的最佳用途可以提供从微藻生物质获得的更宽和更便宜的高效产物。在这方面,与传统技术(卤素灯,荧光灯灯,高压钠灯等)相比,LED照明技术在时尚中。主要原因是其单色光谱和可调光强度。与其他光源相比,LED的这些特性是它们的主要资产。实际上,这些使得可以评估微藻栽培的昏暗照明的效率。 In addition, cultures of microalgae cultivation are generally carried out under constant light intensity. Modulation of light intensity according to the cell density of螺旋藻可能是有前途的。因此,这种照明技术可以节约电能。此外,LED的长寿命和高电气效率最大限度地减少了热量的产生。它们产生的热量较低,因此可以使它们更接近作物,从而增加光的路径。最后,它们的小尺寸使它们实际上可以集成在所有的生长系统中,特别是光生物反应器中。

一些研究工作表明,LED照明在微藻培养的效率,包括螺旋藻(舒尔茨et al。,2014年;格雷梅尔et al。, 2016年).研究还表明,光强、光谱和光周期对紫花苜蓿的生长和生化组成(特别是色素含量)有相当大的影响螺旋藻.因此,光强度和光谱是关键因素,可以调整以匹配整个或特定的吸收带,以作用于生物量和色素的数量和/或质量。人们普遍认为,红色和白色的光促进大量的生物量,而高强度的光和蓝光促进藻青素的生产。文献中也提到绿光对除藻青素外的色素产生有害。此外,当光强低于饱和光和光抑制光时,生物量随光量增加(帕雷克和斯利瓦斯塔瓦,2001年;Madhyastha和Vatsala, 2007年;Madhyasthaet al。,2009年;et al。,2010年;Kumariet al。, 2015年;et al。,2018年).然而,过程能量效率仍然是一个问题,并且尚未广泛讨论。这项工作的目的是在能效和生产力方面进行调查,生物量生产和光合颜料含量钝顶螺旋藻在不同的光强下,包括暗光条件和不同的光周期。

2材料和方法

2.1微生物及培养条件

螺旋藻本研究使用的物种为arthrospira.platensis(UTEX 1926)并于札洛克介质(扎鲁克,1966年).菌株培养物在60个圆柱形罐中培养 我28岁 摄氏度,200℃时连续照明 μmol · M−2 · s−1.由暖白(3000)提供 K) LED管灯(MAS LED管HF 600 mm HE 8W 830 T5(来自飞利浦)。光强度对应于光合光子通量密度(PPFD)。PPFD是一种光测量系统,它对光在光合活动中的作用的研究做出了最好的响应,因为它考虑了相对量子效率(RQE)(McCree 1971).光度测定法不适用,因为它是基于人眼对光线的敏感度,而人眼对光线的敏感度不同于植物(比格斯,1986).这盏灯已改装成可调暗的。用循环泵搅拌菌种培养物。接种时取一定量的菌株培养物,用30 μm的滤网过滤,稀释高原链球菌札洛克.光自养培养是在25个圆柱形容器中进行的 L在分批模式下。此外,用LED灯(lumitronix的Maxline70暖白色LED条)照明。用光谱辐射计Specbos 1201测量光合光子通量密度(PPFD)值。用循环泵(流速为5000的拉古纳泵)搅拌培养物 L/h).恒温器(NICREW水族馆加热器100 W) 用于将培养物保持在28 摄氏度。

关于光强调制对光传输的影响螺旋藻测试了三种光照条件下的生长和色素含量:

  • 场景1:80μmol·m的恒定光强度−2 · s−1.;

  • 场景2:恒定光强160 μmol·m−2 · s−1.;

  • 场景3:调制光强度照明(80μmol·m−2 · s−1.第2天,160 μmol·m−2 · s−1.之后)。

在光周期方面,研究了160 μmol·m光强下的24:00、20:04和16:08 3个光暗周期(h:h)−2 · s−1.

测量一式三份,结果以平均值表示 ± 95%置信区间,:m ± ts/sqrt(n)其中平均值是多少n价值观(n= 3),年代是估计的标准偏差,t由95%置信区间的Student–Fisher分布和n - 1。

2.2生物量分析

钝顶螺旋藻生物量的测定采用紫外/可见/红外分光光度计(Spectronic 20 GeneisSYS, Spectronic Instruments, USA)在600 nm处测量光密度(OD)。在此基础上,建立了600 nm处生物量干重(DW, g·L-1)与光密度的线性关系。它遵循与et al。(2016)

2.2.1动力学等参数

arthrospira.platensis比生长速率µ(天−1.),按公式计算(1)(et al。, 2007年):(1)在DW2.和DW1.生物量在t天的干重是多少2.和t1.分别地

我们计算了生物产量P(mg · L−1. · 白天−1.)(等式。(2)) (et al。, 2007年)能源效率(g) · 白天−1.·千瓦时−1.)电能对生物质生产的影响(等式。(3)):(2)(3)在DW0和DWn分别是初始和生物量的干重nV (L)为培养量,E为培养量e(kWh)为培养时间T(天)期间led消耗的电能。

2.2.2颜料量化

叶绿素a和类胡萝卜素的测定采用Lichtenthaler(1987).将1.8mL的微藻溶液以10 000×g离心15分钟。在丢弃上清液后,将1.8ml 99.8%的甲醇溶液加入到新鲜的生物质中,混合孔,并在黑暗中在4℃下温育24小时。然后,在黑暗中将样品暴露在室温下4小时。最后,在2000 Tr / min的Zx3涡旋搅拌器中在2分钟内均质化。然后,在分光光度测量之前,将其在20℃下以20℃,4000×g离心10分钟。根据方程(4)和(5)计算CHL-A和类胡萝卜素浓度:(4)(5)哪里A.665, 一种652.和一个470吸光度读数是否为665、652和470 纳米。

藻蓝蛋白的测定方法如下:贝内特和波格拉德(1973).对于Chl-a和类胡萝卜素,取1.8 mL微藻细胞,10 000 × g离心15 min。丢弃上清后,加入1.8 mL 1.5%氯化钙2.(W/V)溶液添加到新鲜生物质中。对新鲜生物量进行4次冻融循环(−20°C黑暗孵育24 h,然后在室温黑暗孵育4 h)。最后用ZX3涡旋搅拌器2000 tr/min匀浆2 min, 20℃4000 × g离心10 min后进行分光光度测定。按公式计算Phy浓度(6):(6)哪里A.615是615处的光密度 纳米。

计算的色素含量为第8天。

3结果和讨论

3.1调制光强对螺旋藻生长和色素含量

3.1.1生物质生产

光是微藻细胞增殖的基本能量来源和光合作用的重要因素。在光自养状态下,光是微藻生长所必需的(瓦希丁et al。,2013年).在目前的工作中,没有发现光抑制范围的强度测试。还应该注意的是,对于每个场景,没有观察到任何滞后阶段。这与延迟期的持续时间主要取决于培养基而不是光照条件这一事实是一致的。根据培养基与接种物培养基的差异,可以观察到这一阶段。

图12.说明细胞生长的观察钝顶螺旋藻对上述三种情况进行8天的培养。当光照强度为80 μmol·m时,生物量产率最低−2 · s−1.),而在方案2(恒定光强为160 μmol·m)下运行时达到最高−2 · s−1.)和情景 3(调制光强度80–160 μmol · M−2 · s−1.) (图1)这与之前的研究一致,之前的研究证明微藻的比生长率与光照强度成正比,达到饱和水平(羌族et al。, 1998;et al。, 2007年;Dubinsky, 2013;里索et al。, 2015年).对于场景 3、光照强度由80变为160 μmol · M−2 · s−1.在两天的培养后,评估动态光照强度调整对生长的影响螺旋藻生产率和能源效率方面的增长。事实上,直到第2天,情景1和情景2之间可以观察到一个小的生长差距,这表明在培养开始时没有必要用高强度光照培养。

可以看出,光照强度的增加并不会对光照产生立竿见影的影响螺旋藻生长直到第4天没有显著的生物量增加。这些结果表明,细胞对光照强度的变化(特别是增加)有一段适应期(Danesiet al。, 2004年;髌骨et al。, 2019年).

还可以观察到,场景1和场景2的生长速率在培养4天后急剧下降,而场景3的生长速率则缓慢而单调地下降(图2).在情景1和情景2中,第1天和第4天的平均增长率分别从0.1311天和0.1757天通过−1.至0.0814和0.0833 白天−1.第5天至第8天(分别下降38%和52%)。在场景3中进行比较,平均增长率从0.1439天开始−1.至0.1069 白天−1.(下降26%)。第5 ~ 8天的平均生长率较高,说明情景3获得的最终干生物量仅比情景2低4.18%。

这些观察结果表明,随着细胞浓度的增加,动态地增加光照强度可能是一个很有前景的节能选择。事实上,这种类型的照明可以在低光强度的第一天照亮文化,而不会产生负面影响螺旋藻增长。此外,它可以避免使用饱和光。在饱和光强度下,光照不是最佳的,因为它们的光合作用产量是相同的(羌族et al。, 1998).

表1提供了平均增长率值,生物量生产力和能源效率的不同照明方案。情景2和情景3的生产率和特定增长率最高。情景2和情景3的生物量生产率比情景1高35%。然而,方案1的能源效率最高。事实上,有一个光强范围(低PPFD范围),其中生物量生产率与光强成正比(乔纳卡和诺沃利塔,2004年;et al。,2011年).我们可以假设在160 μmol·m−2 · s−1.,光强度近于或是饱和强度。实际上,在饱和光范围内,光合活性几乎是恒定的,并且不使用显着的光子的显着部分(羌族et al。, 1998)。此外,即使在160℃时未观察到光抑制 μmol · M−2 · s−1.,这种光强度可能足够高,以根据我们的接种浓度在培养的开始时产生光应力。这可能导致较低的过程能效。实际上,当PPFD与光合作用的比率高时,可能会发生过量的光。因此,在恒定的PPFD下,该比率在培养开始时(低光合细胞浓度)高,并且逐渐降低以增加细胞浓度(德米格-亚当斯和亚当斯,1992年).与情景2相比,情景3的生产率降低了5.93%,但能源效率提高了7.92%。这一结果表明,动态调节光照强度可能是一种在保持高产的同时提高培养效率的好方法。这个原理还需要更详细的研究,例如,可以根据培养基的光密度不断地调整光强。

缩略图 图1

生物量钝顶节螺旋体根据三种照明场景进行增长。

缩略图 图2

的增长率钝顶节螺旋体根据三种照明场景进行增长。

表1

三种照明方案的平均增长率、生物量生产率和能源效率。

3.1.2颜料生产

为了解不同光强下色素浓度之间的关系,测定并记录了叶绿素、类胡萝卜素和藻青素的含量,如图2.我们观察到光强度对不同色素的浓度有或多或少的显著影响。

对于类胡萝卜素和叶绿素,光照强度的影响有限 1、2和3分别给出12.29、11.48和12.09 镁 · G−1.,每干物质Chl含量(图3).关于类胡萝卜素浓度,光照场景1比场景2和场景3提供略高的比率(分别高出13.52%和9.02%)。这与结果是一致的库马尔et al。(2011). 其他作者,如拉维隆安德罗et al。(2008),et al。(2010)Danesiet al。(2011),他们观察到叶绿素和类胡萝卜素浓度随着光强的增加而降低。事实上,光强的增加导致类囊体膜光系统浓度的降低和光系统II (PSII)的尺寸减小。然而,尽管叶绿素含量下降,我们可以观察到光合活性的增加,因为叶绿素吸收和将光子转换为化学能的能力仍然存在,甚至大大增加。此外,当光照强度过强或过长时,光抑制会通过光氧化作用破坏光合色素(亨得利et al。, 1987;阿尔维斯et al。,2002年)最后,在某些情况下,叶黄素循环(属于类胡萝卜素家族的色素)的启动是主要的保护,允许以热的形式耗散PSII天线处叶绿素吸收的能量。

与前两种色素不同,光强对藻青素浓度的影响更为显著。场景2(恒定光强160 μmol·m−2 · s−1.)促进藻青素的产生。场景2与场景3的藻青素含量差异为7.86 mg·g−1.(8.39%)。这一结果与文献(陈也et al。, 1996;et al。,2013年),藻青素含量随光强的增加而增加。

不同场景的能源效率如所示表2.我们可以观察到这种情况 1 (80℃时的恒定照明强度 μmol · M−2 · s−1.),为色素生产提供最高的能源效率。总的来说,在叶绿素a和类胡萝卜素含量方面,能源效率几乎比其他情景高两倍。对于藻青素而言,方案1的效率是方案2和方案3的1.4倍。在色素生产的能源效率方面,情景2和情景3之间没有显著差异。

缩略图 图3

钝顶节螺旋体三种照明方案的颜料含量。

表2

色素生产的能量效率和光照强度。

3.2光周期对植物生长的影响螺旋藻生长和色素含量

3.2.1生物质生产

生物质浓度高原链球菌在培养的8天内评估不同的光周期,以恒定光强度为160μmol·m−2 · s−1.(图4).最大生物量生产力38.63 ± 1.13 G · L−1. · 白天−1.最低限度30.88±1.47 g·L−1. · 白天−1.分别在明暗24:00和16:08进行观察(选项卡。3).我们观察到光照时间越长,生物量产量越高(图4)但是,光周期24:00的能效最低。光周期16:08表现出最高的能量效率。在本实验中,光照强度相同,能量效率的提高来自暗相位的持续时间。此外,当光/暗周期接近光合单位的转换时间时,可以获得较高的光合效率(里士满et al。, 2003年;Amini Khoeyiet al。,2012年;et al。,2014年).光合作用分两个阶段进行:光反应和暗反应。在光反应中,蓝藻利用光分解水分子。这个反应产生化学能,提供NADPH(烟酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸)和高能量化合物ATP(腺嘌呤三磷酸)。NADPH2和TP是必需的,特别是对无机营养物质的吸收。在暗反应或酶促反应中,蓝藻吸收CO2.产生碳水化合物,脂质(瓦希丁et al。,2013年).因此,暗反应在光照时间也会发生,特别是当培养物持续被光照时。因此,微藻吸收的部分能量没有被利用。

光周期24:00、20:04和16:08 8 d后的干生物量分别为0.4800±0.0110、0.4690±0.0115和0.4194±0.0095 g·L−1.分别地可以看出,生物量生产从24日和20日开始 与16小时的照明时间不同,h的照明时间几乎相同 H在有关植物生长的研究中也获得了类似的结果螺旋藻和其他微藻(帕雷克和斯利瓦斯塔瓦,2001年;瓦希丁et al。,2013年).此外,16:08的光周期比24:00和20:04的光周期效率分别提高了1.20和1.04倍。此外,当曝光时间螺旋藻培养时间小于16小时时,能源效率降低,在光照16小时后几乎保持不变(念戈兰et al。,2018年)获得的结果表明,生物量生产率和能源效率之间的最佳折衷螺旋藻增长率为20:04 H

缩略图 图4

Arthrospira platensis增长作为不同光周期函数的曲线。

表3

光周期后的增长率、生物量生产力和能源效率。

3.2.2色素生产

研究了光强为160 μmol·m时3种不同光周期(24:0、20:00和16:08光/暗)的影响−2 · s−1.关于颜料含量高原链球菌八天的栽培期如所示图5.最小浓度(67.15±2.91 mg·g−1.获得生物质干重)植物干重20:04。植物素浓度浓度提高39.95%,循环24:00和32.12%,周期16:08。光周期20:04也获得最低叶绿素和类胡萝卜素含量。用16:08光/黑暗循环获得这两种颜料的最大含量。这些结果与研究一致帕里克和斯里瓦斯塔瓦(2001)发现了同样的行为。而光周期24:0和16:08明/暗时,叶绿素和类胡萝卜素含量差异很小:0.13 mg·g−1.叶绿素含量为0.04 mg·g−1.类胡萝卜素。总而言之,光照时间为16 h时,以高效的方式获得高浓度的光合色素(4选项卡。).

表4显示色素生产的能量效率随光照时间的变化。我们注意到光照时间为16小时可以使所有颜料具有最高的能量效率。

缩略图 图5

arthospira platensis颜料含量含量不同的光周期处理。

表4

色素生产的能量效率和光周期。

4结论

研究了光强和光周期对植物生物量和色素生成的影响钝顶螺旋藻已经调查过了。对绝对增长率和能源效率进行了评估。而在最高的光照强度(160)下,产量和比生长率最高 μmol · M−2 · s−1.),获得最低光强度的最佳能效(80μmol·m−2 · s−1.):对于生物质(能源效率提高47%,而生产率降低28%)以及色素生产,尤其是藻蓝蛋白(能源效率提高39%,而生产率降低16%)而言,情况也是如此。

研究还表明,在培养两天后应用光照强度步骤可提高工艺能源效率,同时保持生物质的高生产率。光照强度变化对颜料生产过程能源效率的积极影响不如生物质生产显著。然而,根据培养基的光密度动态调整光强度的原理是有希望的,必须进行更详细的研究。

关于光周期,结果表明,随着光照时间的延长,生物产量和生长速率降低,过程能量效率增加。在这些实验中,由于光照强度不变,能量效率的提高归因于暗期产生的生物量。能量效率与光照时间之间的最佳折衷是对于20:04的循环,可获得生物质的产量和生产力。对于色素生产,尤其是藻蓝蛋白,16:08的循环提供了最佳的能源效率。

利益冲突

作者声明,他们没有已知的可能影响本文所述工作的相互竞争的经济利益或个人关系。

致谢

作者感谢西方地区通过其区域发展基金FEDER/ERDF(GREENALG项目)提供的财政支持。

参考文献

  • Alves PLDCA, Magalhães ACN, Barja PR. 2002。光合作用的光抑制现象及其在造林中的重要性。机器人启示录68(2): 193–208.(谷歌学术搜索)
  • Amini Khoeyi Z, Seyfabadi J, Ramezanpour Z. 2012。光强和光周期对小球藻生物量和脂肪酸组成的影响。Aquac Int.20(1): 41–49.(谷歌学术搜索)
  • 贝克尔。2007作为蛋白质来源的微藻。Biotechnol Adv.25(2): 207 - 220。(谷歌学术搜索)
  • Bennett A, Bogorad L. 1973一种丝状蓝绿藻的互补色适应。J细胞生物学58(2): 419–435.(谷歌学术搜索)
  • Bezerra RP, Montoya EYO, Sato S, Perego P, de Carvalho JCM, Converti A. 2011。光强和稀释率对半连续培养的影响Arthrospira platensis(螺旋藻).动力学单一型方法。生物酸技术102(3): 3215–3219.(谷歌学术搜索)
  • Bhat VB,Madyastha KM。2000藻蓝蛋白:一种体内外有效的过氧自由基清除剂。Biochem Biophys Res Communic275(1): 20–25.(谷歌学术搜索)
  • Biggs W. 1986.辐射测量。in:gensler wg,ed。高级农业仪器。DONDRECHT(荷兰):Springer,PP。3-20。(谷歌学术搜索)
  • Blanken W, Cuaresma M, Wijffels RH, Janssen M. 2013。在人工光源上培育微藻是有代价的。藻类资源2(4): 333 - 340。(谷歌学术搜索)
  • Boussiba S, Richmond AE。1980.在蓝藻中作为储存蛋白质的c -藻青蛋白钝顶螺旋藻拱Microbiol125(1-2): 143–147.(谷歌学术搜索)
  • 卡瓦略亚太区、席尔瓦苏、巴普蒂斯塔、JM、马尔卡塔FX。2011微藻光生物反应器的光需求:生物光子学方面的概述。Appl微生物生物技术89(5): 1275 - 1288。(谷歌学术搜索)
  • 陈海斌,吴俊英,王克发,et al。2010年。叶绿素a和藻蓝蛋白生产的模拟钝顶螺旋藻根据各种发光二极管。生物化学工程53(1): 52-56。(谷歌学术搜索)
  • 陈超英,高PC,蔡CJ,李DJ,张建生。2013.同时提高c -藻青素产量和CO的工程策略2.固定钝顶螺旋藻生物酸技术145:307-312。(谷歌学术搜索)
  • 陈夫飞,张勇,郭胜。1996。生长和藻青素的形成钝顶螺旋藻在它的文化。生物技术公司18(5): 603 - 608。(谷歌学术搜索)
  • Chojnacka K,Nooryta A. 2004.评估螺旋藻在光自养、异养和混合营养培养中的生长。酶微生物技术34(5): 461–465.(谷歌学术搜索)
  • Danesi EDG, Rangel-Yagui CO, Carvalho JCM, Sato S. 2004。降低光照强度对叶绿素生长和产量的影响钝顶螺旋藻生物质生物能源26(4): 329 - 335。(谷歌学术搜索)
  • Danesi Edg,Rangel-Yagui Co,Sato S,Carvalho JCM。2011.增长和内容钝顶螺旋藻利用不同氮源在不同光照强度和温度下培养的生物量叶绿素。布拉兹J Microbiol42(1): 362–373.(谷歌学术搜索)
  • Demmig Adams B,Adams WW.1992.植物对强光胁迫的光保护和其他反应。植物生理学植物分子生物学43(1): 599–626.(谷歌学术搜索)
  • 杜巴斯基Z. 2013.光合作用。Intech。https://doi.org/10.5772/56742(谷歌学术搜索)
  • 加拉索C,外邦人,厄菲他道,et al。2019.微藻衍生物作为人类健康的潜在营养和食品补充剂:预防和拦截癌症的重点。营养物11(6): 1226。(谷歌学术搜索)
  • 格雷姆瑟M,海宁M,施密特J,et al。2016发光二极管(LED)在光营养微藻培养中的应用:现状与展望。Appl微生物生物技术100(3): 1077 - 1088。(谷歌学术搜索)
  • Hendry GAF, Houghton JD, Brown SB. 1987。叶绿素的降解——一个生物学之谜。新植物学家107(2): 255 - 302。(谷歌学术搜索)
  • Koru E.2012。土粮螺旋藻(Arthrospira):生产和质量标准。见于:El-Samragy Y, ed.食品添加剂。InTech,页191 - 202。(谷歌学术搜索)
  • Kumar M,Kulshreshtha J,Singh GP。2011蓝藻的生长和生物色素积累钝顶螺旋藻在不同的光强和温度下。布拉兹J Microbiol42(3): 1128–1135.(谷歌学术搜索)
  • Kumari A,Pathak,Guria C.2015年。发光二极管对植物生长的影响钝顶螺旋藻使用NPK-10:26:26复合肥料:螺旋藻NPK肥料和LED中的增长。Phycolog Res63(4): 274 - 283。(谷歌学术搜索)
  • 李淑,李杰,金妍,李茜。2016高效液相色谱法生产高纯度藻蓝蛋白钝顶螺旋藻采用基于发光二极管的两级培养。生物科技:生物化学》178(2): 382 - 395。(谷歌学术搜索)
  • 廖琦,李磊,陈若,朱X.2014。一种产生光/暗循环的新型光生物反应器,用于改善微藻培养。生物酸技术161: 186–191.(谷歌学术搜索)
  • 利希滕塔勒香港。1987叶绿素和类胡萝卜素:光合生物膜的色素。甲基酶148: 350 - 382。(谷歌学术搜索)
  • 香港中央阿斯塔,Vatsala TM.2007。中国颜料生产镰状螺旋藻在不同的光物理条件下。Biomol英格24(3):301-305。(谷歌学术搜索)
  • Madhyastha HK,Sivashankari S,Vatsala TM.2009.来自中国的C-藻蓝蛋白镰状螺旋藻在蓝光照射下表现出较高的体外抗氧化活性。生物化学工程43(2): 221 - 224。(谷歌学术搜索)
  • McCree KJ。1971.作物植物光合作用的作用光谱、吸光度和量子产率。阿格利司Meteorol9: 191 - 216。(谷歌学术搜索)
  • Niangoran U, Tian F, Canale L, Haba CT, Buso D, Zissis G. 2018。研究了led光谱对其发光性能的影响钝顶螺旋藻在批培养中生长。在:2018年IEEE环境与电气工程国际会议暨2018年IEEE工业和商业电力系统欧洲会议(EEEIC/I&CPS Europe),pp。1-4。(谷歌学术搜索)
  • Pareek A,Srivastava P.2001.植物生长的最佳光周期钝顶螺旋藻J叶绿醇Res14(2): 219 - 220。(谷歌学术搜索)
  • Patel Ak,Jae MJ,Min EH,Sang JS。光条件对绿色微藻混纺培养的影响。生物酸技术282:245-253。(谷歌学术搜索)
  • 强H,扎米Y,里士满A.1998。光强、光路和培养密度对小麦产量的综合影响钝顶螺旋藻(蓝藻)。欧洲药典33(2): 165–171.(谷歌学术搜索)
  • Ravelonandro博士,Ratianarivo DH,Joannis Cassan C,Isambert A,Raherimandimby M.2008。光质和光强对水稻栽培的影响钝顶螺旋藻来自Toliara(马达加斯加)的一个封闭系统。J Chem Technol Biotechnol83(6): 842 - 848。(谷歌学术搜索)
  • 里士满A,郑武Z,扎米Y.2003。高效利用强光提高光合生产率:光程、最佳种群密度和细胞生长抑制之间的相互关系。Biomol英格20(4-6): 229–236.(谷歌学术搜索)
  • Rizzo RF, dos Santos BDNC, de Castro GFPDS,et al。2015钝顶节螺旋体在不同光照条件下生产藻胆蛋白用于食品。食品科学技术(Campinas)35(2): 247 - 252。(谷歌学术搜索)
  • Rodríguez-Concepcíon M, Avalos J, Bonet ML,et al。2018.类胡萝卜素的全球视角:新陈代谢、生物技术以及对营养和健康的益处。Progr脂质体70: 62 - 93。(谷歌学术搜索)
  • Romay C, Gonzalez R, Ledon N, Remirez D, Rimbau V. 2003。c -藻青素:具有抗氧化、抗炎和神经保护作用的胆道蛋白。蛋白质肽Sci4(3): 207 - 216。(谷歌学术搜索)
  • Schulze PSC、Barreira LA、Pereira HGC、Perales JA、Varela JCS。2014用于微藻生产的发光二极管(LED)。生物技术趋势32(8): 422–430.(谷歌学术搜索)
  • 田F,布索D,王T,洛佩斯M,宁戈兰U,齐西斯G.2018。红光和蓝光对藻蓝蛋白合成的影响钝顶螺旋藻基于光合作用辐射。J Sci Technol Light41(0):148-152。(谷歌学术搜索)
  • Wahidin S, Idris A, Shaleh SRM。2013.光强和光周期对微藻生长及脂质含量的影响微绿球藻sp。生物酸技术129: 7 - 11。(谷歌学术搜索)
  • 王春宇,付聪,刘永昌。2007.使用发光二极管对培养的影响钝顶螺旋藻生物化学工程37(1): 21–25.(谷歌学术搜索)
  • 薛S,苏梓,丛伟.2011.企业成长钝顶螺旋藻在间歇照明下增强。生物科技J》151(3): 271–277.(谷歌学术搜索)
  • Zarrouk C.1966。对不同因素的影响的贡献,即牛角面包和光合面包的物理和化学特性螺旋藻最大值盖特勒。巴黎大学。(谷歌学术搜索)

引用本文如下: Niangoran NUF, Buso D, Zissis G, Prudhomme T. 2021。光强和光周期对生物质能源效率和色素生产的影响螺旋藻(钝顶节螺旋体).OCL28:37。

所有的表

表1

三种照明方案的平均增长率、生物量生产率和能源效率。

表2

色素生产的能量效率和光照强度。

表3

光周期后的增长率、生物量生产力和能源效率。

表4

色素生产的能量效率和光周期。

所有数字

缩略图 图1

生物量钝顶节螺旋体根据三种照明场景进行增长。

在文本中
缩略图 图2

的增长率钝顶节螺旋体根据三种照明场景进行增长。

在文本中
缩略图 图3

钝顶节螺旋体三种照明方案的颜料含量。

在文本中
缩略图 图4

Arthrospira platensis增长作为不同光周期函数的曲线。

在文本中
缩略图 图5

arthospira platensis颜料含量含量不同的光周期处理。

在文本中

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